异丙醇法：
适用场景：通常用于大体积样本（如质粒大抽）或需要快速操作的场景。
添加盐离子： 加入1/10液体体积3 M NaAc。
加入异丙醇： 加入 0.6 至 0.7 倍体积的室温异丙醇。
沉淀： 充分颠倒混匀。异丙醇沉淀通常在室温下进行即可，因为低温反而容易导致盐类大量析出。
离心： 4°C 下，12000g离心 10 分钟。注意：异丙醇形成的沉淀通常是透明胶状的，比乙醇沉淀更难观察。
弃废液： 小心吸走上清。
洗涤（关键步骤）： 加入 管一半体积的 70% 乙醇。这一步非常关键，因为 70% 乙醇可以置换掉沉淀中的异丙醇并洗去析出的盐分。4°C 下，12000g离心 5分钟。小心吸走上清。
空离：12000 g离心10s。
干燥：弃去上清，开盖空气干燥 5 分钟。
复溶： 加入适量 TE 缓冲液或无菌超纯水溶解。
乙醇法：
适用场景：乙醇沉淀最为常用，尤其在需要高纯度 DNA（如测序、酶切）时。
添加盐离子： 向 DNA 溶液中加入 1/10 体积的 3 M 乙酸钠 (NaAc, pH 5.2)。确保充分混匀。
加入乙醇： 加入 2 至 2.5 倍体积的冰冷无水乙醇。
沉淀： 充分颠倒混匀。为了提高回收率，通常建议在 -20°C 放置 30 分钟以上（或者 -80°C 放置 15 分钟）。注意：如果 DNA 浓度极低，可延长至过夜。
离心： 在 4°C 下，以12,000 g离心 15 分钟。
弃废液： 小心弃去上清液，避免触碰管底的白色沉淀（Pellet）。
洗涤：加入 管一半体积的 70% 乙醇，轻飘沉淀（无需重悬），再次4°C离心 5 分钟。
空离：12000 g离心10s。
干燥：弃去上清，开盖空气干燥 5 分钟（至酒精味消失，但不要让沉淀完全干透成透明状，否则极难复溶）。
复溶： 加入适量 TE 缓冲液或无菌超纯水溶解。
PS：
① 使用3M乙酸钠，残留的钾离子可能影响后续反应（如PCR），适用于电转感受态前的DNA纯化、质粒提取，但禁用含SDS的裂解液纯化DNA；使用NaCl，可能残留大量盐分，适用于一般DNA纯化，但电转感受态禁用。
② 异丙醇提取的DNA没有乙醇提取的纯度高，优先乙醇提取，但是如果需要快速提取，用异丙醇。
